細胞數量確定
1.將細胞懸浮液（100μL/孔）接種在96洞孔板中。將板在潮濕的培養箱中預孵育（例如，在37℃，5％CO2下）。
2.向板的每個孔中加入10μLCCK8溶液。注意不要在孔洞中引入氣泡，因為它們會干擾O.D.讀數。
3.將培養板在培養箱中孵育1-4小時。
4.使用酶標儀測量450 nm處的吸光度。
細胞增殖和細胞毒性測定
1.將種子細胞以103-104個細胞/孔的密度在96孔板中在100μL培養基中培養。將細胞在CO2培養箱中于37℃培養24小時。
2.將不同濃度的待測物質加入板中。
3.將培養板在培養箱中孵育適當的時間（例如，6,12,24或48小時）。
4.使用重復移液器向板的每個孔中加入10μLCCK8溶液。注意不要在孔洞中引入氣泡，因為它們會干擾O.D.讀數。
5.將培養板在培養箱中孵育1-4小時。
6.在讀取孔板之前，重要的是在軌道振動器上輕輕混合1分鐘，以確保顏色均勻分布。
7.使用酶標儀測量450 nm處的吸光度。
數據分析
統計分析有幾種方法，您可以選擇使用O.D.值或細胞數量，我們提供其中一種方法。
細胞存活率（％）=[（As-Ab）/（Ac-Ab）]×100
抑制率（％）=[（Ac-As）/（Ac-Ab）]×100
As=實驗孔吸光度（含有細胞，培養基，CCK-8和待測化合物的孔的吸光度）。
Ab=空白孔吸光度（含有培養基和CCK-8的孔的吸光度）。
Ac=對照孔吸光度（含有細胞，培養基和CCK-8的孔的吸光度）。
制作標準曲線
1.細胞計數板計數細胞懸液中的細胞數。
2.使用培養基，等比稀釋細胞懸液為一個濃度梯度，通常需要5-7個濃度梯度，每組幾個復孔。然后接種細胞。（注意每孔的細胞數量。如果您將細胞懸液稀釋在管中，在加入培養板的孔之前，請小心再次混勻細胞。每孔中細胞懸液的體積應該是一致的。）
3.培養直至細胞貼壁（通常2-4小時），然后每100μl培養基加入10μl CCK-8。繼續孵育1-4小時，用酶標儀測量450nm處的吸光度。制作出一條以細胞數為X軸坐標，O.D.值為Y軸坐標的標準曲線。
可以基于該曲線確定待測樣品的細胞數。使用此標準曲線的先決條件是培養檢測條件相同。
注意事項
1.確保藥物和CCK8均勻分布在培養基中。
2.細胞增殖越多,顏色越深;細胞毒性越強，顏色越淺。
3.對于貼壁細胞，每孔至少需要1000個細胞（100μl培養基）。對于白細胞，由于靈敏度較低，每孔至少需要2500個細胞（100μl培養基）。推薦的96孔板每孔最大細胞數為25000。如果使用24孔或6孔板進行該檢測，請計算相應的每孔的細胞數，并調整CCK-8的體積，使其為每孔總液體體積的10％。
4.因為CCK8測定是基于活細胞中的脫氫酶活性，影響脫氫酶活性的條件或化學物質可能導致實際活細胞數與使用CCK-8測定活細胞數之間有差異。
5.WST-8可能與還原劑反應生成WST-8 formazan。如果使用還原劑(例如一些抗氧化劑)會干擾檢測。如果待檢測體系中存在較多的還原劑，需設法去除。
6.孵育2小時后，背景O.D.值一般為0.1-0.2單位。
7.注意不要在孔中引入氣泡，因為它們會干擾O.D.值。
8.如果您想對CCK8溶液進行滅菌，請使用0.2μm的膜過濾溶液。
9.孵育時間因孔中細胞的類型和數量而異。通常，白細胞著色較弱，因此可能需要較長的孵育時間（長達4小時）或大量細胞（~105細胞/孔）。
10.如果細胞懸液中存在高濁度,測量并減去樣品在600nm或更高波長的O.D值。
11.CCK8不能用于細胞染色。
12.培養基中的酚紅不會影響實驗結果，酚紅的吸光度可以在計算時，通過扣除空白孔中本底的吸光度而消去，因此不會對檢測造成影響。
13.CCK8的毒性非常低，在CCK8測定完成后，相同的細胞可用于其他細胞增殖測定，例如結晶紫測定，中性紅測定或DNA熒光測定。（除非細胞極為稀少，不推薦。）
14.該試劑盒可用于大腸桿菌，但不能用于酵母細胞。
15.在讀取平板之前，您可以在搖床上輕柔混勻。
16.我們建議將細胞接種在靠近培養板中央的孔中，最外圍一圈孔中的培養基容易蒸發，可以用PBS，水或培養基填充這些孔。
17.如果您沒有450nm濾光片。您也可以使用吸光度在430和490nm之間的濾光片,450nm濾光片具有最佳靈敏度。
18.測量450nm處的吸光度，如果您需要進行雙波長測定，作為參考波長可以測定650nm處的吸光度。
19.藥物中金屬離子的存在可能會影響CCK8的靈敏度。終濃度為1mM的氯化亞鉛、氯化鐵、硫酸銅會抑制5%、15%、90%的顯色反應，使靈敏度降低。如果終濃度是10mM的話，將會100%抑制。
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